南京林业大学学报(自然科学版) ›› 2012, Vol. 36 ›› Issue (05): 51-55.doi: 10.3969/j.jssn.1000-2006.2012.05.009
任淑娟,喻方圆* ,徐丽萍
出版日期:
2012-09-30
发布日期:
2012-09-30
基金资助:
REN Shujuan, YU Fangyuan*, XU Liping
Online:
2012-09-30
Published:
2012-09-30
摘要: 采用流式细胞术研究不同引发处理下马尾松种子胚细胞DNA含量的差异,测定不同引发处理下马尾松种子的发芽率。结果表明:(1)PEG 8000溶液引发处理能促进胚细胞DNA的复制,4倍体细胞的比例增加,其中以20 %PEG 8000溶液引发3~4 d的处理对种子胚细胞DNA合成的促进作用最明显。(2)胚细胞增殖指数最高的引发处理是20 %PEG 8000溶液在15 ℃时引发3~4 d。(3)较高浓度的PEG 8000溶液和较长的引发时间有利于提高马尾松种子发芽率。(4)在一定范围内,胚细胞增殖指数与种子发芽率呈显著正相关。
中图分类号:
任淑娟,喻方圆,徐丽萍. 引发对马尾松种子细胞周期和发芽率的影响[J]. 南京林业大学学报(自然科学版), 2012, 36(05): 51-55.
REN Shujuan, YU Fangyuan*, XU Liping. Effects of priming on cell cycle and germination of Pinus massoniana seeds[J].Journal of Nanjing Forestry University (Natural Science Edition), 2012, 36(05): 51-55.DOI: 10.3969/j.jssn.1000-2006.2012.05.009.
[1]郑光华. 种子生理研究[M]. 北京: 科学出版社,2004. [2]焦旭雯, 赵树进. 流式细胞术在高等植物研究中的应用[J]. 热带亚热带植物学报, 2006,14(4): 354-358. [3]Sliwinska E. Nuclear DNA replication and seed quality [J]. Seed Science Research, 2009,19(1): 15-25. [4]国家质量技术监督局. GB 2772—1999 林木种子检验规程[S]. 北京:中国标准出版社,2000. [5]吴后男.流式细胞术原理与应用教程[M].北京:北京大学医学出版社,2008. [6]翟中和,王喜忠,丁明孝.细胞生物学[M]. 3版.北京:高等教育出版社,2007. [7]Bino R J, de Vries J N, Kraak H L, et al. Flow cytometric determination of nuclear replication stages in tomato seeds during priming and germination [J]. Annals of Botany,1992,69(3): 231-236. [8]Lanteri S, Saracco F, Kraak H L, et al. The effects of priming on nuclear replication activity and germination of pepper (Capsicum annuum) and tomato (Lycopersicon esculentum) seeds[J]. Seed Science Research,1994,4(2):81-87. [9]Saracco F, Bino R J, Bergervoe J H V, et al. Influence of priminginduced nuclear replication activity on storability of pepper (Capsicum annuum L.) seeds [J]. Seed Science Research,1995,5(1): 25-29. [10]Van Pijlen J G, Groot S P C, Kraak H L,et al. Effects of prestorage hydration treatments on germination performance, moisture content, DNA synthesis and controlled deterioration tolerance of tomato (Lycopersicon esculentum Mill.) seeds [J]. Seed Science Research,1996,6(2): 57-63. [11]Gurusinghe S H, Cheng Z, Bradford K J. Cell cycle activity during seed priming is not essential for germination advancement in tomato [J]. Journal of Experimental Botany,1999,50(330): 101-106. [12]De Castro R D, van Lammeren A A M, Groot S P C, et al. Cell division and subsequent radicle protrusion in tomato seeds are inhibited by osmotic stress but DNA synthesis and formation of microtubular cytoskeleton are not [J]. Plant Physiology,2000,122(2): 327-335. [13]Sliwinska E, Jendrzejczak E. Sugarbeet seed quality and DNA synthesis in the embryo in relation to hydrationdehydration cycles [J]. Seed Science and Technology,2002,30(3): 597-608. [14]Sliwinska E, Sadowski H. Comparison of the effects of bioactive compounds and hydration treatments on germination and cell cycle activity of sugarbeet seeds [J]. Seed Science and Technology,2004,32(3):847-850. [15]Kozeko L E, Troyan V M. The relationship between the mitotic activity and moisture content of recalcitrant seeds of Acer saccharinum(L.) during maturation, postmaturation drying and germination[J]. Seed Science Research,2000,10(3): 225-232. [16]Dahal P, Bradford K J, Jones R A. Effect of priming and endosperm integrity on seed germination rates of tomato genotypes. I: Germination at suboptimal temperature [J]. Journal of Experimental Botany, 1990, 41(11):1441-1453. [17]Taylor A G, Motes J E, Kirkham M B. Germination and seedling growth characteristic of three tomato species affected by water deficits[J]. Journal of the America Society for Horticultural Science, 1982, 107(1):282-285. [18]De R, Kar R K. Seed germination and seedling growth of mungbean (Vigna radiata) under water stress induced by PEG6000 [J]. Seed Science & Technology, 1995, 23(2):301-308. [19]Chamberlin M A, Horner H T, Palmer R G. Nuclear size and DNA content of the embryo and endosperm during their initial stages of development in Glycine max (Fabaceae)[J]. American Journal of Botany, 1993, 80(10): 1209-1215. [20]Wyman J, Tremblay M F, Laliberte S. Cell cycle activation during imbibition and visible germination in embryos and megagametophytes of Jack pine (Pinus banksiana Lamb.)[J]. Annals of Botany, 1996, 78(2): 245-253. |
[1] | 许慧慧, 班卓, 王晨雪, 毕泉鑫, 刘肖娟, 王利兵. 文冠果BZR1基因家族鉴定及功能分析[J]. 南京林业大学学报(自然科学版), 2025, 49(2): 12-22. |
[2] | 戚亚, 王改萍, 轩辕欣彤, 彭大庆, 李硕民, 李守科, 曹福亮. 文冠果药用优良无性系评价[J]. 南京林业大学学报(自然科学版), 2025, 49(2): 38-44. |
[3] | 陈升侃, 郭东强, 邓紫宇, 唐庆兰, 廖长琨, 杨植旺, 朱原立, 李昌荣. 斑皮柠檬桉种源树高生长稳定性评价[J]. 南京林业大学学报(自然科学版), 2025, 49(2): 67-74. |
[4] | 姚俊修, 任飞, 王因花, 李庆华, 燕丽萍, 郑岩, 吴德军. 基于荧光SSR标记的接骨木种质资源遗传多样性分析[J]. 南京林业大学学报(自然科学版), 2025, 49(2): 75-82. |
[5] | 柯欣, 费琪, 夏馨蕊, 叶建仁, 朱丽华. 抗松针褐斑病湿地松胚性愈伤组织诱导及体胚产量影响因素的研究[J]. 南京林业大学学报(自然科学版), 2025, 49(1): 87-94. |
[6] | 林强, 徐进, 李上前, 林云斌, 章允清, 欧阳磊. 福建福鼎柳杉种子园半同胞子代遗传变异分析与早期选择[J]. 南京林业大学学报(自然科学版), 2025, 49(1): 78-86. |
[7] | 姜波, 安新民. 基因组精准编辑技术及其在林木育种中的应用[J]. 南京林业大学学报(自然科学版), 2025, 49(1): 11-20. |
[8] | 张伟溪, 丁密, 苏晓华, 李爱平, 王小江, 余金金, 李政宏, 黄秦军, 丁昌俊. 小叶杨×欧洲黑杨杂交F1代生长及叶片解剖结构杂种优势分析与抗旱性评价[J]. 南京林业大学学报(自然科学版), 2025, 49(1): 46-58. |
[9] | 杨袁木, 李娜, 陈新宇, 徐放, 潘文, 张卫华. 红锥种源与无性系的材性变异研究[J]. 南京林业大学学报(自然科学版), 2024, 48(6): 41-50. |
[10] | 闫平玉, 张磊, 王佳兴, 冯可乐, 王浩浩, 张含国. 红松天然种群遗传多样性分析及核心种质构建[J]. 南京林业大学学报(自然科学版), 2024, 48(5): 69-80. |
[11] | 王佳兴, 闫平玉, 孙佰飞, 刘劲宏, 冯可乐, 张含国. 长白落叶松自由授粉家系生长变异及优良家系早期选择[J]. 南京林业大学学报(自然科学版), 2024, 48(5): 81-89. |
[12] | 匡泽宇, 彭冶, 方炎明. 铁冬青花挥发性化合物对中华蜜蜂访花的影响[J]. 南京林业大学学报(自然科学版), 2024, 48(4): 254-260. |
[13] | 刘莉, 瞿印权, 余延浩, 王倩, 洑香香. 青钱柳全基因组SSR位点分析及多态性引物开发[J]. 南京林业大学学报(自然科学版), 2024, 48(4): 67-75. |
[14] | 刘夏岚, 宋子琪, 胡凤荣, 尚旭岚. 青钱柳二倍体和四倍体叶特征比较研究[J]. 南京林业大学学报(自然科学版), 2024, 48(4): 76-84. |
[15] | 马坛, 田野, 王书军, 李文昊, 段启英, 张庆源. 不同性别南方型黑杨无性系叶片对土壤短期间歇性干旱的生理响应[J]. 南京林业大学学报(自然科学版), 2024, 48(3): 172-180. |
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